1. Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Нижегородской области «Городская клиническая больница № 30 Московского района г. Нижний Новгород», 605157, Нижний Новгород, Россия
2. Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Приволжский исследовательский медицинский университет», 603005, г. Нижний Новгород, Россия
3. ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт прикладной физики Российской академии наук», 603950, г. Нижний Новгород, Россия

Keywords: Острая мезентериальная ишемия, инфаркт кишечника, окклюзия брыжеечной артерии, микроциркуляция, оптическая когерентная томография, оптическая когерентная ангиография; острая ишемия кишки, ущемление тонкой кишки, ишемический некроз, морфометрия, геморрагический некроз

Резюме:Цель. Исследовать морфофункциональные проявления ишемического поражения тонкой кишки по данным прижизненной оптической когерентной томографии и последующего гистологического анализа. Материал и методы. Крысам линии «Вистар» моделировали: острую окклюзионную мезентериальную ишемию перевязкой а. jejunales (группа «I»); острую артерио-венозную ишемию ущемлением петли тощей кишки и ее брыжейки вместе с а. et v. jejunales. Состояние интрамуральных сосудов in vivo оценивали с помощью оптической когерентной ангиографии (ОКА). После развития макроскопических признаков нежизнеспособности проводили гистологическое исследование кишки. Результаты. Развитие ишемического поражения в группе «I» сопровождалось уменьшением толщины кишечной стенки на 34,8–42,4% по сравнению с интактной кишкой (p=0,032) за счет разрушения слизисто-подслизистого слоя — по данным гистологического исследования, уменьшением общей длины функционирующих интрамуральных сосудов на 4,6% (p=0,004) — по данным ОКА. В группе «II» длина функционирующих сосудов в ущемленной петле снижалась на 89,6%, а в приводящих и отводящих участках — на 6,1% (р=0,001). В гистологических препаратах ущемленной петли отмечали резко расширенные тромбированные вены во всех слоях стенки, отек серозно-мышечного слоя, геморрагическое пропитывание слизистой оболочки, утолщение стенки на 25,2% в сравнении с интактной. Заключение. Комплексный анализ результатов ОКА и гистологического анализа стенки ишемизированной тонкой кишки позволил определить морфологические проявления, специфичные для нарушения артериального и артерио-венозного брыжеечного кровотока. При окклюзии мезентериальной артерии среди патогенетических механизмов альтерации кишечной стенки преобладают гипоперфузия и ишемия слизистой. В ущемленной кишке основным фактором деструкции и некроза является острая недостаточность венозного оттока.

• Литература всего 12 ⇓ :: .
  1. Acosta S. Mesenteric ischemia. Current opinion in critical care. 2015;21(2):171–178. https://doi.org/10.1097/ MCC.0000000000000189
  2. Ярцев П.А., Титова Г. П., Гришин А. В. и соавт. Компенсаторные возможности тонкой кишки после обширной дистальной и проксимальной ее резекции (экспериментальное исследование). Журнал им. Н. В. Склифосовского Неотложная медицинская помощь. 2017; 6(2): 124–131.
  3. Тимербулатов В.М., Тимербулатов Ш. В., Сагитов Р. Б. и соавт. Диагностика ишемических повреждений кишечника при некоторых острых хирургических заболеваниях органов брюшной полости. Креативная хирургия и онкология. 2017; 7(3):12–19.
  4. Хасанов Р.Р., Гумеров А. А., Вессель Л. М. Роль длины тонкой кишки в развитии синдрома короткой кишки. Хирургия им. Н. И. Пирогова. 2017;1:63–67.
  5. Хрипун А.И., Шурыгин С. Н., Миронков А. Б., Прямиков А. Д. Венозная форма нарушения мезентериального кровообращения: диагностика и лечение. Хирургия. Журнал им. Н. И. Пирогова. 2017; 12:95–102. https://doi.org/10.17116/hirurgia20171295–102
  6. Matveev LA, Zaitsev VY, Gelikonov GV et al. Hybrid M-modelike OCT imaging of three-dimensional microvasculature in vivo using reference-free processing of complex valued B-scans. Optics letters. 2015; 40;7:1472–1475. https://doi. org/10.1364/ol.40.001472
  7. Курышева Н.И., Маслова Е. В. Оптическая когерентная томография с функцией ангиографии в диагностике глаукомы. Вестник офтальмологии. 2016; 5: 98–102.
  8. Chen C, Yang VXD. Gabor optical coherence tomographic angiography (GOCTA) (Part I): human retinal imaging in vivo. Biomed Opt Express. 2017 Nov 20;8(12):5724–5734. https://doi.org/ 10.1364/BOE.8.005724
  9. Schlett CL, Maurovich Р, Ferencik М et al. Histogram analysis of lipid-core plaques in coronary computed tomographic angiography: ex vivo validation against histology. Invest Radiol. 2013 Sep;48(9):646–53. https://doi.org/10.1097/ RLI.0b013e31828fdf9f
  10. Tang Q., et al. Depth-resolved imaging of colon tumor using optical coherence tomography and fl uorescence laminar optical tomography. Biomed. Opt. Express. 2016; 7(12): 5218–5232. https://doi.org/10.1364/BOE.7.005218
  11. Kohli D.R., et al. Performance characteristics of optical coherence tomography in assessment of Barrett’s esophagus and esophageal cancer: systematic review. Diseases of the Esophagus. 2017; 30(11): 1–8. https://doi.org/10.1093/dote/dox049.
  12. Moiseev A., Ksenofontov S., Gorozhantseva M. et al. Real time OCT-based angiography device with hand-held probe for everyday clinical use. Journal of Biophotonics. 2018 May 7: e201700292. https://doi.org/10.1002/jbio.201700292

Для цитирования:
Рябков M. Г., Балеев М. С., Киселева Е. Б., Сироткина М. А., Романов И. Н., Геликонов Г. В., Бедерина Е. Л., Миронов А. А., Бесчастнов В. В., Гладкова Н. Д. Кишечная стенка при острой ишемии: данные прижизненной оптической когерентной томографии и гистологического анализа. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2019;162(2): 96–101. DOI: 10.31146/1682-8658-ecg-162-2-96-101
Загрузить полный текст

1. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научно-исследовательский институт морфологии человека», 117418, г. Москва, Россия

Ключевые слова: ободочная кишка, крысы, новорожденные, препубертатные, энтеральная нервная система, энтероэндокринные клетки, серотонин, микрофлора

Резюме:Цель исследования. Охарактеризовать структурно-функциональные особенности нервной, эндокринной системы толстой кишки и состава заселяющей ее микрофлоры у новорожденных и препубертатных крыс Вистар. Материалы и методы: исследование выполнено на 12 новорожденных и 13 препубертатных самцах крыс Вистар. С помощью иммуногистохимических методов были изучены структура межмышечного нервного сплетения и выявлены эндокринные клетки в ободочной кишке. Методом высокоэффективной жидкостной хроматографии оценивали концентрацию серотонина в стенке ободочной кишки и плазме периферической крови. Определяли соотношение основных таксонов бактерий просветной микрофлоры методом ПЦР в реальном времени. Результаты. Показано, что в период новорожденности межмышечное нервное сплетение окончательно не сформировано, глиальных клеток в ганглиях мало. Относительное число энтероэндокринных клеток и содержание серотонина в стенке кишки и крови в этот возрастной период минимальное. Состав просветной микрофлоры у новорожденных крыс характеризуется преобладанием таксонов Firmicutes, Enterobacteria. По сравнению с новорожденными у препубертатных крыс межмышечное нервное сплетение сформировано: нервная сеть крупноячеистая, число глиальных клеток в ганглиях увеличивается в 3–4 раза. Число энтероэндокринных клеток увеличивается в 2,5 раза, содержание серотонина в стенке ободочной кишки и периферической крови повышаются почти в 80 и 6000 раз соответственно. В составе просветной микрофлоры преобладают таксоны Firmicutes, снижается количество Bifi dobacteria, Enterobacteria. Заключение. Таким образом, в постнатальном развитии толстой кишки от периода новорожденности к препубертатному возрасту происходят увеличение числа глиальных клеток в ганглиях межмышечного нервного сплетения, разрежение энтеральной нервной сети, увеличение числа серотонин-продуцирующих энтероэндокринных клеток, повышение продукции серотонина и изменения состава микрофлоры, связанные с переходом с молочного вскармливания на твердый корм. Ключевые слова: ободочная кишка, крысы, новорожденные, препубертатные, энтеральная нервная система, энтероэндокринные клетки, серотонин, микрофлора

• Литература всего 17 ⇓ :: .
  1. Furness J. B. Th e enteric nervous system and neurogastroenterology. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2012; 9(5): 286–94. doi: 10.1038/nrgastro.2012.32.
  2. Gunawardene A. R., Corfe B. M., Staton C. A. Classifi cation and functions of enteroendocrine cells of the lower gastrointestinal tract. Int. J. Exp. Pathol. 2011; 92(4): 219–31. doi: 10.1111/j.1365–2613.2011.00767.x.
  3. Chen M., Gao L., Chen P., Feng D., Jiang Y., Chang Y., Jin J., Chu F. F., Gao Q. Serotonin-exacerbated DSS-induced colitis is associated with increase in MMP-3 and MMP-9 expression in the mouse colon. Mediators Infl amm. 2016;2016:5359768. doi: 10.1155/2016/5359768
  4. Nicholson J. K., Holmes E., Kinross J., Burcelin R., Gibson G., Jia W., Pettersson S. Host-Gut Microbiota Metabolic Interactions. Science. 2012; 336(6086): 1262–7. doi: 10.1126/science.1223813.
  5. Pistollato F., Sumalla Cano S., Elio I., Masias Vergara M., Giampieri F., Battino M. Role of gut microbiota and nutrients in amyloid formation and pathogenesis of Alzheimer disease. Nutr Rev. 2016; 74(10): 624–34. doi: 10.1093/nutrit/nuw023.
  6. Gabbani T., Marsico M., Marocchi M., Biagini M. R. Isolated hypoganglionosis in young man with autism. Dig. Liver Dis. 2017; 49(1): 104. doi: 10.1016/j.dld.2016.10.002.
  7. Mercado C. P., Quintero M. V., Li Y., Singh P., Byrd A. K., Talabnin K., Ishihara M., Azadi P., Rusch N. J., Kuberan B., Maroteaux L., Kilic F. A. serotonin-induced N-glycan switch regulates platelet aggregation. Sci Rep. 2013; 3:2795. doi: 10.1038/srep02795.
  8. Amireault P., Sibon D., Côté F. Life without peripheral serotonin: insights from tryptophan hydroxylase 1 knockout mice reveal the existence of paracrine/autocrine serotonergic networks. ACS Chem. Neurosci. 2013; 4(1): 64–71. doi: 10.1021/cn300154j.
  9. Castrogiovanni P., Musumeci G, Trovato FM, Avola R, Magro G, Imbesi R. Eff ects of high-tryptophan diet on pre- and postnatal development in rats: A morphological study. Eur. J. Nutr. 2014; 53(1): 297–308. doi: 10.1007/ s00394–013–0528–4.
  10. Cossais F., Durand T., Chevalier J., Boudaud M., Kermarrec L., Aubert P., Neveu I., Naveilhan P., Neunlist M. Postnatal development of the myenteric glial network and its modulation by butyrate. Am. J. Physiol. – Gastrointest. Liver Physiol. 2016; 310(11): G941–51. doi: 10.1152/ ajpgi.00232.2015.
  11. Peck C. J. Samsuria S. D., Harrington A. M., King S. K., Hutson J. M., Southwell B. R. Fall in density, but not number of myenteric neurons and circular muscle nerve fi bres in guinea‐pig colon with ageing. Neurogastroenterol Motil. 2009; 21(10): 1075-e90. doi: 10.1111/j.1365– 2982.2009.01349.x.
  12. Oshima S., Fujimura M., Fukimiya M. Changes in number of serotonin-containing cells and serotonin levels in the intestinal mucosa of rats with colitis induced by dextran sodium sulfate. Histochem Cell Biol. 1999; 112(4): 257–63
  13. Chen J. J., Li Z., Pan H. Maintenance of serotonin in the intestinal mucosa and ganglia of mice that lack the high-affi nity serotonin transporter: Abnormal intestinal motility and the expression of cation transporters. J. Neurosci. 2001; 21(16): 6348–61.
  14. Nasuti C., Coman M. M., Olek R. A., Fiorini D., Verdenelli M. C., Cecchini C., Silvi S., Fedeli D., Gabbianelli R. Changes on fecal microbiota in rats exposed to permethrin during postnatal development. Environ Sci Pollut Res Int. 2016; 23(11): 10930–7. doi: 10.1007/s11356–016– 6297-x
  15. de Vries P., Soret R., Suply E., Heloury Y., Neunlist M. Postnatal development of myenteric neurochemical phenotype and impact on neuromuscular transmission in the rat colon.American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology. 2010; 299(2): G539–47. doi: 10.1152/ajpgi.00092.2010.
  16. Yano J. M., Yu K., Donaldson G. P., Shastri G. G., Ann P., Ma L., Nagler C. R., Ismagilov R. F., Mazmanian S. K., Hsiao E. Y. Indigenous bacteria from the gut microbiota regulate host serotonin biosynthesis. Cell. 2015 Apr 9;161(2):264–76. doi: 10.1016/j.cell.2015.02.047.
  17. Savelieva K. V., Zhao S., Pogorelov V. M., Rajan I., Yang Q., Cullinan E., Lanthorn T. H. Genetic disruption of both tryptophan hydroxylase genes dramatically reduces serotonin and aff ects behavior in models sensitive to antidepressants. PLoS One. 2008; 3(10): e3301. doi: 10.1371/ journal.pone.0003301.

Для цитирования:
Тихонов Е. А., Золотова Н. А., Хочанский Д. Н., Макарова О. В. Структурно-функциональная характеристика нервной, эндокринной систем и состава микрофлоры ободочной кишки у крыс вистар в периоды новорожденности и препубертата. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2019;162(2): 102–106. DOI: 10.31146/1682-8658-ecg-162-2-102-106
Загрузить полный текст

1. ФГБУ ДПО «Центральная государственная медицинская академия» УД Президента РФ, Москва
2. ГКБ № 1 им. Н. И. Пирогова, Москва, Россия
3. ФГБУ «Поликлиника № 2», Москва, Россия
4. МЕДСИ, Москва, Россия

Ключевые слова: МСКТ живота. КТ диагностика патологии толстой кишки. КТ диагностика болезни Крона. КТ диагностика лимфомы толстой кишки.

Резюме:Утолщение стенки толстой кишки (ТК) является одним из легко определяемых и часто встречаемых симптомов заболеваний ТК, выявляемых при компьютерной томографии (КТ). Целью исследования служило раскрытие возможностей стандартной КТ брюшной полости в диагностике заболевании ТК. Для достижения поставленной цели проанализированы 359 КТ брюшной полости, выполненной по стандартному протоколу. Средний возраст больных составил 64,1+15,8 лет. Гендерное соотношение: превалирование больных мужского пола 1,3:1,0. Нормальная толщина стенки толстой кишки зависит от степени расширения просвета или растяжения и в подавляющем большинстве случаев динамична. Утолщением стенки ТК считали стойкое несоответствие ее толщины внутреннему просвету или наружному диаметру, с учетом крайних значений норм по литературным данным от 2 до 10 мм. Анализируемые случаи утолщения стенки ТК были разделены на 3 группы: фокальное (53%), сегментарное (30%) или диффузное утолщение (17%). Утолщение стенки определяемое при неспецифических воспалительных заболеваниях (болезнь Крона, неспецифический язвенный колит, недифференцируемый, псевдомебранозный и ишемический колит) чаще имело сегментарную (12%) или диффузную (16%) протяженность, с минимумом в у группе фокального утолщения — 1% при болезни Крона. Авторами определена достоверная разница утолщения стенки ТК по протяженности при доброкачественных и злокачественных процессах (p<0,05). Вероятность диагностики рака ТК достоверно повышается при уменьшении протяженности определяемого утолщения стенки ТК до фокального, с обратной зависимостью при увеличении и высокой вероятностью воспалительного заболевания (p<0,01). Таким образом, симптом утолщения стенки ТК является маркерным признаком заболеваний ТК. В нашем исследовании утолщение стенки ТК встречалось как при злокачественных, так и при доброкачественных заболеваниях, с превалированием последних, и большой долей в них заболеваний воспалительного генеза (p<0,05). В группе фокальных утолщений лидером, не учитывая дивертикулит по причине легко узнаваемых признаков этого заболевания, был рак ТК, что свидетельствует в пользу высокой специфичности признака (p<0,01). Однако решающее значение в дифференциальной диагностике патологии ТК имел анализ дополнительных признаков: тип и характер контрастного усиления, изменения брыжейки, клетчатки и примыкающих сосудов.

• Литература всего 23 ⇓ :: .
  1. Ивашкин В.Т., Лапина Т. Л. ред. Гастроэнтерология. Национальное руководство. Краткое издание: рук. Москва, ГЭОТАР-Медиа, 2012. 480 с.
  2. Колопроктология: клинические рекомендации / под ред. Ю. А. Шелыгина. — Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2015–528 с.
  3. Свистунов, А. А. Болезни кишечника: учебное пособие / А. А. Свистунов, М. А. Осадчук. — Москва: Лаборатория знаний, 2016–288 с.
  4. Каторкин, С. Болезнь Крона / С. Каторкин, П. Андреев, В. Исаев // Мед. газ. — 2015 — № 58 (7 авг.). — С. 8–9; Мед. газ. — 2015 — № 59 (12 авг.). — С. 9.
  5. Th omas R. de Wijkerslooth, de Haan M. C., Stoop E. M. et al. Burden of colonoscopy compared to non-cathartic CT-colonography in a colorectal cancer screening programme: randomised controlled trial // Gut. — 2012. — Vol. 61. — Р. 1552–1559.
  6. American Cancer Society. Key Statistics for Colorectal Cancer 2019. [Electronic resource] URL: https://www. cancer.org/cancer/colon-rectal-cancer/about/keystatistics.html (accessed 11.03.19).
  7. Агеева Л.И., Александрова Г. А., Зайченко Н. М., Кириллова Г. Н., Леонов С. А., Огрызко Е. В. и др. под ред. Оксенойт Г. К. Здравоохранение в России 2017; Москва, Стат.сб./Росстат., 2017. 170 с.
  8. Методические рекомендации для организаторов здравоохранения, врачей первичного звена, врачей-специалистов. Алгоритм выявления онкологических заболеваний у населения Российской Федерации. Москва, 2009. — 38 С.
  9. Разенак Й. Воспалительные заболевания кишечника: практическое руководство / Й. Разенак, С. И. Ситкин. 7-е изд., перераб. и доп. Москва; Санкт-Петербург, 2014. 108 с.
  10. Костюченко, Л. Н. Генетические аспекты воспалительных заболеваний кишечника и выбор тактики лечения с использованием хирургической и нутриционной коррекции / Л. Н. Костюченко, О. А. Смирнова, И. В. Угаров // Эксперим. и клин. гастроэнтерология. — 2015 — № 8 — С. 56–63.
  11. Doubeni C.A., Corley D. A., Quinn V. P. et al. Eff ectiveness of screening colonoscopy in reducing the risk of death from right and left colon cancer: a large community-based study. Gut. 2018; 67(2): 291–298.
  12. Miyaso H., Iwakawa K., Hamada Y., et al. Ten Cases of Colovesical Fistula due to Sigmoid Diverticulitis. Hiroshima J. Med. Sci. 2015; 64(1–2): 9–13.
  13. Mehtap B.A., Sibel B., Akif A. Th e sensitivity of MR colonography using dark lumen technique for detection of colonic lesions. Turk. J. Gastroenterol. 2014; 25: 271– 278.
  14. Lefere P., Gryspeerdt S., eds. Virtual colonoscopy: A practical guide. Paris: Springer; 2005. 204 p.
  15. Burling D., Halligan S., Slater A., et al. Potentially serious adverse events at CT colonography in symptomatic patients: national survey of the United Kingdom. Radiology. 2006; 239 (2): 464–471.
  16. Дмитращенко А. А. Возможности компьютерной томографии на различных этапах диагностики и лечения рака ТК: автореферат дис. … доктора медицинских наук: 14.00.19. — Санкт-Петербург, 1995. — 38 с.
  17. Lichtenstein G., Loft us E., Isaacs K., et al. ACG clinical guideline: management of Chron”s disease in adults. Am. J. Gastroenterol. 2018; 113 (4): 481–517.
  18. Ивашкин В.Т., Шелыгин Ю. А., Халиф И. Л. и др. Клинические рекомендации Российской гастроэнтерологической ассоциации и ассоциации колопроктологов России по диагностике и лечению болезни Крона. 2017. 29 с.
  19. Dobson, Giles & Hickey, Caroline & Trinder, John. Clostridium diffi cile colitis causing toxic megacolon, severe sepsis and multiple organ dysfunction syndrome. Intensive care medicine. 2003. 29: 1030 DOI: 10.1007/ s00134–003–1754–7.
  20. Lewis R. New C.diffi clie Guidelines Refi ne Diagnosis. Medscape Medical News. WebMD Inc. February 16, 2018. www.medscape.com/viewarticle/892813.
  21. Avunduk C. Manual of Gastroenterology, Diagnosis and Th erapy. Lippincott Williams & Wilkins. 2008. 516 p.
  22. Маев И.В., Дичева Д. Т., Андреев Д. Н. Дивертикулярная болезнь толстой кишки. М.: 2015. 22 с.
  23. Mehmet R., Erhan A., Karaosmanoglu.A., et al. Diverticulitis: a comprehensive review with usual and unusual complications. 2017; 8 (1): 19. DOI: 10.1007/ s13244–016–0532–3

Для цитирования:
Кошелев Э. Г., Китаев С. В., Беляев Г. Ю., Егоров А. А. КТ диагностика заболеваний, проявляющихся утолщением стенки толстой кишки. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2019;162(2): 107–119. DOI: 10.31146/1682-8658-ecg-162-2-107-119
Загрузить полный текст